研究膜流动性的一种方法。首先用荧光物质标记膜蛋白或膜脂， 然后用激光束照射细胞表面某一区域， 使被照射区域的荧光淬灭变暗形成一个漂白斑。由于膜的流动性，漂白斑周围的荧光物质随着膜蛋白或膜脂的流动逐渐将漂白斑覆盖，使淬灭区域的亮度逐渐增加， 最后恢复到与周围的荧光光强度相等。

　　细胞膜蛋白的标记方法有很多种。可以用非特异性的染料，如异硫氰酸荧光素（fluorescein isothiocyanate，FITC）将细胞膜蛋白全部进行标记。也可用特异性的探针，如荧光抗体，标记特异的膜蛋白。膜蛋白一旦被标记就可用激光束进行局部照射处理，使荧光脱色，形成直径约为1μm的白斑。若是可移动的膜蛋白，则会因蛋白的移动，使白斑消失，若是不能移动的蛋白。则白斑不会消失。

　　根据荧光恢复的速度， 可推算膜脂的扩散速度为每秒钟为几个微米，而膜蛋白的扩散速度变化幅度较大，少数膜蛋白的扩散速度可达到膜脂的速度，大多数蛋白的扩散速度都比膜脂慢，还有一些膜蛋白完全限于某一个区域。正是这种限制，使膜形成一些特定的膜微区（membrane domain），这些微区具有不同的蛋白组成和功能。这实际上是膜蛋白不对称分布带来膜功能的不对称。

　　FRAP技术也有它的不足之处。第一，它只能检测膜蛋白的群体移动，而不能观察单个蛋白的移动。其次，它不能证明膜蛋白在移动时是否受局部条件的限制。为了克服这些不足，发展了单颗粒示综（single-particle tracking，SPT）技术，可以用抗体金（直径15～40 nm）来标记单个膜蛋白，然后通过计算机控制的摄像显微镜进行观察。